細胞免疫熒光實驗常見問題:1、信號弱或者無信號：細胞或組織樣本保存時間過長；2）抗體濃度不合適，參照抗體說明書的稀釋濃度，再根據樣本表達量進行摸索；3）一抗孵育時間不合適，建議 4 ℃ 過夜孵育。2、高背景：封閉不充分；抗體濃度過高；抗體孵育時間過長或溫度過高；清洗不充分；樣本變干，染色過程確保樣品始終浸沒于液體環(huán)境中.3、非特異性染色較多：固定液殘留，這里需要縮短固定時間并且在封閉液中加甘氨酸，并且抗原修復也可以幫助解決非特異性染色；二抗殘留，二抗需要用帶有吐溫 20 的 PBS 溶解，只要熒光顯微鏡的強度還可以增大，那么就可以增加吐溫洗脫掉非特異性染色。免疫熒光技術可以用于研究細胞凋亡和細胞存活。組織免疫熒光檢查

免疫熒光實驗步驟：1.樣本準備：細胞或薄組織。對單層生長細胞，在傳代培養(yǎng)時，將細胞接種到預先放置有處理過的蓋玻片的培養(yǎng)皿中，待細胞接近長成單層后取出蓋玻片，PBS洗兩次；對懸浮生長細胞，取對數生長細胞，用PBS離心洗滌（1000rpm,5min）2次，用細胞離心甩片機制備細胞片或直接制備細胞涂片。2.固定：取適當的固定劑固定樣本。一般用4%PFA固定4℃過夜。固定完畢后的樣本可置于含疊氮納的PBS中4℃保存3個月。3.洗滌：PBS洗滌5min*3次。4.打孔：選擇合適的通透劑處理樣本，目的是使抗體更容易進入細胞與抗原結合。ki67免疫檢測使用熒光抗體方法是免疫熒光技術中常見的操作步驟。

免疫熒光實驗的注意事項：為了保證熒光染色的正確性，初次試驗時需設置下述對照，以排除某些非特異性熒光染色的干擾。①標本自發(fā)熒光對照：標本加1-2滴0.01mol/L，pH7.4的PBS。②特異性對照（抑制試驗）：標本加未標記的特異性抗體，再加熒光標記的特異性抗體。③陽性對照：已知的陽性標本加熒光標記的特異性抗體。如果標本自發(fā)熒光對照和特異性對照呈無熒光或弱熒光，陽性對照和待檢標本呈強熒光，則為特異性陽性染色。一般標本在高壓汞燈下照射超過3min，就有熒光減弱現象，經熒光染色的標本較好在當天觀察，隨著時間的延長，熒光強度會逐漸下降。

檢測復雜的生物學結構需要較高清晰度的熒光信號，并將熒光信號從背景噪聲中分離開來。標準的免疫熒光標記很少能夠獲得較佳信噪比的成像效果。獲得良好圖片和較佳的可供發(fā)表的高質量圖像之間的差異就在于：需要精細調整樣品信號達到峰值特異性、高清晰度和較佳放大倍數。雖然熒光基團是進行高質量細胞成像的較佳選擇，但不可避免地也極易發(fā)生光漂白，即熒光信號的光化學降解或衰退。任何光敏感度的下降都可能導致數據出現偏差，產生假性結果?？勾銣绶馄瑒┛梢员Ｗo熒光標記蛋白的穩(wěn)定性，維持數周乃至數月的圖像信號完整度。免疫熒光技術可以用于研究疾病的發(fā)生機制和醫(yī)治效果評估。

細胞免疫熒光簡單實驗步驟如下：1. 漂洗血清蛋白H7、2-7、4 37度 PBS 2小時。2. -20度甲醇固定20分鐘后,自然、干燥 10分鐘。3. PBS洗凈：3min×3。4. 1%Triton：25 min~30 min、配成50 ultriton+5 mlpBS。5. PBS洗凈：2×5 min。6. 羊血清封閉：37度，20分鐘。7. 一抗，4度過夜，一般要大于18小時或者37度，1-2小時。8. 4度PBS洗凈，3 min×5次。9. 二抗37度小于一小時。10. 37度 PBS洗凈，3×5 min。11. 涼干封片（封閉液PH8.5）；不管采用何種方法，在使用PBS緩沖液漂洗時，都要漂洗干凈并且要測下pH值，可以使用PBS多清洗幾次，也可以延長PBS清洗時間，如果結果背景較高可以延長漂洗的次數和時。免疫熒光技術可以用于研究細胞凋亡、細胞增殖和細胞分化等生物學過程。CD45免疫抗體

免疫熒光技術可以用于研究細胞信號傳導和信號通路。組織免疫熒光檢查

直接免疫熒光：單抗體（一抗）用于免疫染色和檢測目標蛋白。熒光素結合的一抗直接與目標抗原結合，并使用成像顯微鏡觀察。直接免疫熒光的優(yōu)點：由于無需為兩種抗體選擇不同的物種反應性，從而降低了物種交叉反應性問題。與間接免疫熒光相比，時間縮短（操作步驟減少）。直接免疫熒光的缺點：不允許通過二抗進行信號放大；檢測靈敏度降低；熒光素結合一抗的選擇有限；與使用熒光二抗的檢測相比，更昂貴。間接免疫熒光：使用兩種抗體（一抗和二抗）進行免疫染色并檢測目標蛋白。首先，用特異性一抗標記目標蛋白。然后，熒光素結合的二抗（與一抗具有不同的物種反應性）識別結合的抗原-抗體復合物并與一抗結合。由于一個以上的二抗可以與一抗結合，熒光信號被放大，提供了更高的檢測靈敏度。組織免疫熒光檢查