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北京細胞高效轉染試劑產(chǎn)品介紹

來源: 發(fā)布時間:2021-08-26

細胞轉染的原理、操作步驟以及小技巧:脂質體轉染操作步驟:(1)細胞培養(yǎng):取6cm細胞皿,向每孔中加入2mL含1~2×105個細胞培養(yǎng)液,37℃ CO2培養(yǎng)密度至40%~60%,密度過大,轉染后不利篩選細胞。(2) 轉染液制備:在EP管中制備以下兩液(為轉染每一個孔細胞所用的量)A液:用不含血清培養(yǎng)基稀釋1ug 質粒DNA。B液:用不含血清培養(yǎng)基稀釋2ul脂質體。分別將A液與B液輕彈混勻,靜置5分鐘。(3)吸取B液加入至A液中,輕彈混勻。室溫中置10-15分鐘。(4)轉染準備:用1mL不含血清培養(yǎng)液漂洗兩次,再加入4mL不含血清培養(yǎng)液。(5)轉染:把A/B復合物緩緩加入培養(yǎng)液中,搖勻,37℃溫箱置6~24小時,吸除無血清轉染液,換入正常培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng)。(6)瞬時轉染后,可在48h-72h細胞長滿之后,提取細胞蛋白或者RNA,驗證敲減/過表達效率。這會導致和轉染相關的細胞行為的變化。北京細胞高效轉染試劑產(chǎn)品介紹

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細胞轉染,你至少要掌握以下幾點:主要有下面幾種方法::化學法:磷酸鈣法、DEAE-右旋糖苷法、陽離子脂質體法;物理法:電穿孔法、顯微注射法、顆粒傳遞法;細菌介導法:逆轉錄細菌、腺細菌A. 陽離子脂質體法:帶正電的脂質體與核酸帶負電的磷酸基團形成復合物被細胞內(nèi)吞。特點:簡單通用,適用性廣,轉染效率高,重復性好,但轉染時需除血清,轉染效率隨細胞類型變化大。由于脂質體復合物與貼壁細胞的接觸機會遠大于懸浮細胞,所以貼壁比懸浮轉染效率要高。懸浮細胞建議使用電穿孔法。B. 電穿孔法:利用高壓電脈沖對細胞膜的干擾,使其形成利于核酸進入的微孔。南京鄭州細胞高效轉染試劑細胞密度以及轉染的時間長短和培養(yǎng)基中血清的含量都是影響轉染效率的重要因素。

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細胞轉染為什么不能加血清:不同的細胞及轉染試劑要求轉染的條件是不同 的。較好是在靠前次實驗前做一個預實驗,比如:HeLa,293,CHO,COS7, MCF-7,HepG2等細胞,是否加血清,對不同的細胞是有不同的影響的,有些細胞是可以有血清的,有些加血清就會受影響。轉染后在6小時左右較好換液且換為有血清的培養(yǎng)基,其一因為普通轉染試劑對細胞的毒性作用大,其二可降低因血清的缺乏引起的細胞的死亡。轉染時不加血清是防止血清的干擾作用,轉染后可適時加入。加入過早會引起未轉染細胞的優(yōu)勢生長,過晚會引起較多細胞死亡。可實時觀察1/5細胞變圓的時候加入血清。

細胞轉染實驗的方法有哪些:1.. 電穿孔法。通過短暫的高電場電脈沖處理細胞,沿細胞膜的電壓差異會導致細胞膜的暫時穿孔。DNA被認為是穿過孔擴散到細胞內(nèi)的。電脈沖和場強的優(yōu)化對于成功的轉染非常重要,因為過高的場強和過長的電脈沖時間會不可逆地傷害細胞膜而裂解細胞。理論上說電穿孔法可用于各種細胞,且不需要另外采購特殊試劑,但需要昂貴的電轉儀。此法每次轉染需要更多的細胞和DNA,因為細胞的死亡率高。每種細胞電轉的條件都需要進行多次優(yōu)化。2. 細菌介導的傳染。傳染需要將目的基因克隆到特定的細菌體系中,經(jīng)過包裝細胞的包裝得到改造后的細菌,再進行傳染。優(yōu)點是轉染效率特別高,尤其是難以轉染的原代細胞、細胞。缺點是構建細菌周期長,環(huán)節(jié)多,易出錯,費用也高。形成DNA脂復合物,也能被表面帶負電的細胞膜吸附。

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穩(wěn)定轉染細胞系的篩選:生長的細胞比不分裂的細胞更快的受到GENETICIN物品的影響。轉染后,在開始篩選前等待48-72小時,使細胞表達足夠量的抗性酶,保證在開始篩選時可以自我保護。轉染后48-72小時倒掉培養(yǎng)基,加入含有GENETICIN物品的培養(yǎng)基,物品的濃度根據(jù)劑量反應曲線確定,足夠殺死未轉染細胞。因為許多因子影響到篩選所需的GENETICIN物品的較佳濃度,包括細胞類型,培養(yǎng)基和血清濃度等,所以有必要對每種細胞作一個劑量反應曲線,確定較佳濃度。篩選較多可能需要一周時間,因為在致死劑量的GENETICIN物品存在條件下,細胞會分裂1-2次。在次培養(yǎng)細胞時使用較低劑量的物品,一般是篩選劑量的一半。篩選后的細胞一般是離散的克隆,根據(jù)實驗目的不同,可以分別純化(克?。占M行大量培養(yǎng)或染色并進行抗性克隆的計數(shù)。由于脂質體對細胞有一定的毒性,所以轉染時間一般不超過24小時。溫州正規(guī)細胞高效轉染試劑平均價格

細胞轉染是完成這一過程的必需步驟。北京細胞高效轉染試劑產(chǎn)品介紹

細胞轉染操作方法:轉染 ,是將外源性基因導入細胞內(nèi)的一種專門技術。隨著基因與蛋白功能研究的深入,轉染目前已成為實驗室工作中經(jīng)常涉及的基本方法。轉染大致可分為物理介導、化學介導和生物介導三類途徑。電穿孔法、顯微注射和基因屬于通過物理方法將基因導入細胞的范例;化學介導方法很多,如經(jīng)典的磷酸鈣共沉淀法、脂質體轉染方法、和多種陽離子物質介導的技術;生物介導方法,有較為原始的原生質體轉染,和現(xiàn)在比較多見的各種細菌介導的轉染技術。理想細胞轉染方法,應該具有轉染效率高、細胞毒性小等優(yōu)點。細菌介導的轉染技術,是目前轉染效率較高的方法,同時具有細胞毒性很低的優(yōu)勢。但是,細菌轉染方法的準備程序復雜,常常對細胞類型有很強的選擇性,在一般實驗室中很難普及。其它物理和化學介導的轉染方法,則各有其特點。北京細胞高效轉染試劑產(chǎn)品介紹

與原代細胞相關的擴展資料:

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原代細胞(primary culture cell)是指從機體取出后立即培養(yǎng)的細胞。有人把培養(yǎng)的第1代細胞與傳10代以內(nèi)的細胞統(tǒng)稱為原代 細胞培養(yǎng)。原代細胞不僅廣泛應用于分子、 細胞生物學和生物醫(yī)學基礎研究,如 蛋白質組學、基因組學、 細胞株(系)研究、DNA,RNA和遺傳學研究等,還可應用于當今熱門的 生物醫(yī)藥產(chǎn)業(yè)如 藥物篩選、 藥物代謝和毒理研究、**藥物的研究等。原代細胞在生物醫(yī)藥領域有不可替代性作用,市場前景廣闊。
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