細胞傳代的方法都有哪些：根據(jù)不同的細胞采取不同的方法。貼壁生長的細胞用消化法傳代；部分貼壁生長的細胞用直接吹打即可傳代；懸浮生長的細胞可以采用直接吹打或離心分離后傳代，或用自然沉降法吸除上清后，再吹打。原代培養(yǎng)的開始傳代應注意的問題？細胞沒有生長到足以覆蓋瓶底壁的大部分表面以前，不要急于傳代；原代培養(yǎng)時細胞多為混雜生長，不同的細胞有不同的消化時間，因此要根據(jù)需要注意觀察及時處理，并根據(jù)不同細胞對胰蛋白酶的耐受時間而分離和純化所需要的細胞；吹打細胞時動作要輕巧盡可能減少對細胞的損傷；開始傳代時細胞接種數(shù)量要多一些，使細胞能盡快適應新環(huán)境而利于細胞生存和增值；隨消化分離而脫落的組織塊也可一并傳入新的培養(yǎng)瓶使用這種方式需注意勿使攪拌速度過快，否則即可使培養(yǎng)液溢出又容易造成污染。寧波正規(guī)原代細胞分離試劑盒

原代細胞培養(yǎng)實驗室常規(guī)步驟為：1）將動物組織從機體中取出并消毒除去存留在組織上的細菌、細菌、等污染源，這些污染源將會所需培養(yǎng)的原代細胞凋亡、停止生長和繁殖直至死亡，因此整個原代細胞培養(yǎng)過程中較全在無菌狀態(tài)下進行。2）將組織塊在選定的蛋白酶溶液中浸泡20-30分鐘，通常在37C水浴里進行，而蛋白酶的選定取決于部位組織和所需細胞的類型，比如成骨、肌肉、心、肝等就需要用胰蛋白酶才能解而出單個細胞，但是對于腦組織和乳腺等軟組織，就只能用分解能力較弱的膠原蛋白酶，以免損傷分散出來的單個細胞。徐州正規(guī)原代細胞分離試劑盒銷售廠家會極大提高原代培養(yǎng)的細胞在體外存活率。

膠原酶的配制：建議看相關的文獻進行膠原酶的配制。小編常用的是DMEM進行配制，配制好的膠原酶消化液放置在37℃水浴鍋內預熱（注意現(xiàn)用現(xiàn)配）。胰酶（酶聯(lián)合法獲取原代細胞中會加入胰酶，相關文章也蠻多的）膠原酶消化時間：根據(jù)組織特性，消化時間會有差異。以小鼠腎細胞為例，加入膠原酶Ⅰ進行消化后，放入37℃培養(yǎng)箱中消化45min~1h左右，期間每10min中震蕩一次，知道組織塊幾乎完全消失為止（若是組織塊剪得非常細小，時間可以短一些，30min左右即可）。原代細胞的獲?。好赶ǎ核迷噭耗z原酶和胰酶。

使用RFect系列小核酸轉染試劑做siRNA/miRNA轉染測實驗注意事項：1.細胞接種：一般做轉染前現(xiàn)在接種/鋪板（細胞計數(shù)大約5*10^4cell/ml），使做轉染前細胞密度在30-50%；如果細胞是原代細胞，接種密度可以密一些，細胞計數(shù)在2*10^6cell/ml；懸浮細胞可以在轉染當天接種/鋪板（細胞計數(shù)大約5*10^4cell/ml），待細胞狀態(tài)穩(wěn)定后做轉染前細胞密度30-40%。2.為了能在使用時有較好的轉染效果，靠前次使用建議您用24孔板做，每孔2ul轉染試劑即可。將較佳轉染條件（siRNA與轉染試劑的用量、比例）放大到對應的孔板即可~適當增大原代培養(yǎng)接種的細胞密度。

原代細胞的分離與培養(yǎng)：原代細胞是出了名的難養(yǎng)，對培養(yǎng)環(huán)境和實驗操作的要求更苛刻。原代細胞在體外通常只能傳代少數(shù)幾次，某些原代細胞（如神經(jīng)元細胞）甚至無法進行傳代。對于研究人員來說，如何才能經(jīng)濟高效地培養(yǎng)好原代細胞，并圍繞這有限幾次傳代的細胞設計實驗，是更大的一個挑戰(zhàn)。原代細胞是取材于切除的動物組織，通過酶處理，在適當?shù)臈l件下培養(yǎng)直至達到足夠的數(shù)量。分離的原代細胞有兩種類型：貼壁細胞（錨定依賴性生長）和懸浮細胞（錨定非依賴性），貼壁細胞多來自部位組織，而懸浮細胞多來自血液系統(tǒng)的細胞。具有體內組織特異性特征并且純度高。蘇州正規(guī)原代細胞分離試劑盒

能夠進行懸浮培養(yǎng)的細胞，其生命力一般都比較旺盛。寧波正規(guī)原代細胞分離試劑盒

原代細胞培養(yǎng)注意事項：1.收到細胞時，要鏡下觀察是否有污染情況；收到細胞的前幾天，要做好各種倍數(shù)的鏡下拍照記錄，以防細胞出現(xiàn)問題后，可以跟公司很好地溝通。2.收到細胞后，不要馬上處理。應置于培養(yǎng)箱中靜置4h以上再操作。如果不著急，可靜置過夜。3.細胞的靠前次傳代，一定要密度高一些傳代，原代細胞傳代密度低，很難長起來。建議1:2-1:3傳代。4.原代細胞傳代時（內皮細胞，貼壁為例），0.25%+0.53nM的胰酶消化，1ml消化液37度培養(yǎng)箱內消化30sec，再加入5ml培養(yǎng)基（正常消化貼壁細胞，我們使用胰酶和培養(yǎng)基的量是1:1，但是原代細胞必須用大量培養(yǎng)基中和胰酶）。5.原代細胞不建議凍存，因為凍存很容易復活不成功。如果要凍存的話，建議在P2或P3代凍存，凍存液中的血清越多越好，建議比例9（血清）:1（DMSO）。6.原代細胞復蘇時，置于37-38度水浴融化細胞，并加入10ml培養(yǎng)液（正常貼壁細胞復蘇時，也可以使用這種比例，復蘇成活率會較大提高），離心重懸鋪板。寧波正規(guī)原代細胞分離試劑盒