HE染色常見問題：Q3：細胞核染色過淺，顏色暗淡答：切片在蘇木素染液中停留過短，或蘇木素過度氧化失效，或分化時間太長。對策：重新染色。將組織切片放入0.01%氫氧化鈉、0.5%氨水、飽和的碳酸氫鈉溶液、乙醇溶液，每個3-5min即可，接著重新染色?？梢赃m當(dāng)?shù)亟M織的嗜堿性以增強核染色，如Zenker液固定的切片可放入5%碳酸氫鈉溶液中3h，自來水沖洗5-10min染色，或Bouin液固定的切片可放入5%碳酸氫鈉溶液中1h，自來水沖洗10min染色。Q4：細胞核染色過深，胞漿著藍色答：切片在蘇木素染液中停留過長；或切片太厚；或分化時間太短。這種情況首先鏡下看看切片厚度(比較好厚度1-2層細胞核)，要么重新染色，要么重新制片。南京英瀚斯，專業(yè)的病理染色實驗服務(wù)平臺。常用HE染色試劑配制方法。海南靠譜的HE染色外包

HE染色不管怎么操作，始終無法染色或淡染答：這種情況一般因為組織固定時采用了酸性甲醛;或者組織在甲醛中浸泡時間太長;或者久置的甲醛變性分解為甲酸。補救：防患于未然，要么使用新鮮的中性甲醛固定，要么在存放的甲醛中加一點碳酸鈉中和甲酸。對于已經(jīng)固定的組織可考慮再次固定；對于已經(jīng)制出的片子，染色前采用5%重鉻酸鉀溶液浸泡半小時以上，然后自來水漂洗5min，可改善染色。也可以將切片放入3%硫酸鐵銨溶液中，補充染色媒介，增強蘇木素與組織的親和力(蘇木素染色必須要媒介才能染上，單純的蘇木素與組織的親和力很弱)。內(nèi)蒙古推薦的HE染色報告HE染色試驗技術(shù)及注意事項。

HE染色知識點1：對送檢組織標(biāo)本的要求送檢組織標(biāo)本在手術(shù)切除或活檢后應(yīng)當(dāng)立即放入4%中性緩沖甲醛溶液中固定。尸檢標(biāo)本應(yīng)當(dāng)盡量在死亡后盡早取材固定。送檢組織需要全部取材的，應(yīng)當(dāng)在送檢單上注明，有特殊要求（如細菌培養(yǎng)、解釋道化學(xué)分析等）應(yīng)當(dāng)事先聯(lián)系，并且在標(biāo)本未固定前進行處理。知識點2：組織取材要求在對送檢組織標(biāo)本進行詳細檢查的基礎(chǔ)上，根據(jù)診斷的需要，確定取材的部位和塊數(shù)。切取的組織應(yīng)當(dāng)按照不同的部位分別給予不同的編號或標(biāo)記，以便鏡檢時核對。另外，盡可能在取材前對有意義的標(biāo)本的表面及剖面鏡下攝影，并編號存檔南京英瀚斯，專業(yè)的病理染色實驗服務(wù)平臺。

HE染色伊紅著色淡分析及應(yīng)對原因：（1）伊紅染液的pH值可能大于5；（2）藍化液殘留過多；（3）切片太??；（4）切片經(jīng)伊紅染色后在乙醇脫水時間過長。對策：檢查伊紅染液的pH值，如果必要的話，用乙酸將其調(diào)節(jié)在4～5之間，從而使伊紅染色彩艷麗。確保每次藍化步驟完成后，使用的弱堿性溶液被充分洗去，玻片上沒有殘留的弱堿性溶液。檢查切片的厚度。脫水時不要讓切片在低濃度乙醇停留時間過長，因為含水多的低濃度乙醇會將伊紅的顏色分化掉。HE染色規(guī)范化流程及注意事項？

HE染色常見問題：切片染色不均勻，有片狀的弱著**存在答：（1）取材時組織太厚，固定過久，導(dǎo)致深部組織固定不佳，而表淺組織過度固定，而透明、脫水、浸蠟均是如此，這樣在后期染色時就會出現(xiàn)染色不均勻。應(yīng)該將厚的組織剖開固定。（2）制片過程有問題，切片厚薄不一，或者有刀痕，或組織與玻片間存在氣泡。同一張切片厚薄不一，一般都是在制片時，刀片固定不佳或刀片鈍或刀片與組織角度不佳（一般比較好角度為5°）（3）脫蠟前未烘烤，脫蠟時間過短或脫蠟液使用過久，導(dǎo)致脫蠟不徹底。（4）染色液過少，著色不均勻；或染色時部分組織干涸而另一部分濕潤，這樣會導(dǎo)致組織吸附染料的能力不一。（5）分化不當(dāng)。南京英瀚斯，專業(yè)的病理染色實驗服務(wù)平臺。HE染色原理 試劑 染色步驟 注意事項 。海南靠譜的HE染色外包

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HE染色常見問題：成片的染色模糊不清，灰染答：（1）組織未及時固定，部分自溶；或固定不佳，深部組織未處理到。這種只能重新固定了。（2）盡管乙醇也是一種固定液，但盡量少用或不用，因為其會導(dǎo)致組織發(fā)硬變脆，染色效果不好。（3）包埋時蠟的溫度過高，或切片后烤片時間和溫度過久過高都不好，可能會導(dǎo)致無法染色。（4）脫蠟不徹底；染料有問題；分化過度導(dǎo)致的顏色變淡，鏡下組織界限不清；染完后的脫水和透明不佳，水霧殘留在組織上。（5）通風(fēng)窗中（防止空氣中的水霧），戴口罩操作封片（減少哈氣帶來的水霧）。海南靠譜的HE染色外包